间接法ELISA试剂盒检测步骤概述
间接法ELISA试剂盒的检测步骤通常包括以下几个重要环节,以确保结果的准确性和可靠性。

试剂准备
首先,从冰箱中取出
尊龙凯时的试剂盒,平衡至室温(一般为18-25℃)。确保所有试剂的温度一致,以减少实验误差。根据试剂盒说明书的要求,将所需试剂(如酶标二抗、底物等)从储存状态复溶或稀释至工作浓度。
包被抗原
使用包被缓冲液将抗原稀释至合适浓度,通常根据试剂盒说明推荐的浓度进行操作。将稀释后的抗原加入到酶标板的微孔中,确保每孔加入一定量(如100μl或50μl),以确保抗原均匀分布。随后,使用封板膜密封酶标板,将其放置在适宜温度(通常为4℃过夜或37℃孵育1-2小时)环境中,以便抗原充分吸附在固相表面。
洗板步骤
孵育结束后,轻轻倒掉每孔内的液体,然后将酶标板倒置在吸水纸上拍干,以去除孔内残留液体。接着,向每孔加入洗涤缓冲液(如PBST),每孔通常加入200-300μl,浸泡1-2分钟后,重复洗涤3-5次,以去除未结合的抗原及杂质。
样本加样
对待检测样本使用样本稀释液进行适当稀释,稀释倍数通常基于预实验结果或试剂盒说明书。将稀释后的样本加入洗净的酶标板孔中,每孔加入一定量(如100μl),同时设置空白对照孔、阴性对照孔和阳性对照孔。添加完成后,用封板膜密封酶标板,放置于37℃孵育箱中,通常孵育1-2小时,使样本中的抗体与孔内的抗原充足结合。
再洗板
加样后,再次使用洗涤缓冲液洗涤酶标板3-5次,以去除未结合的样本杂质和未与抗原结合的抗体。
加入酶标二抗
根据
尊龙凯时的试剂盒说明,将酶标二抗稀释至工作浓度。向每孔加入稀释后的酶标二抗,通常为100μl。封板后,在37℃孵育箱孵育30-60分钟,以确保酶标二抗与抗原上的特异性抗体充分结合。
终洗及显色反应
结束孵育后,按照之前的洗板步骤,用洗涤缓冲液彻底洗涤酶标板5-6次,确保去除未结合的酶标二抗,以免生成非特异性显色。然后,调配底物工作液,通常将底物A液和优势B液按照试剂盒说明书要求的比例混合均匀后,每孔加入100μl,轻轻振动使其反应。随后在37℃避光环境下反应15-30分钟,观察颜色变化,并在适当时机终止反应。
反应终止与结果读取
根据试剂盒说明,向每孔加入终止液,通常每孔加入50μl或100μl,以及时终止酶与底物的反应。将酶标板放入酶标仪中,选择合适的波长(通常为450nm或按照说明书要求)读取数据,记录各孔的吸光度值(OD值),并根据阴性、阳性对照及样本的OD值,结合
尊龙凯时提供的判断方法,确定样本的检测结果,进而评估样本中抗体的含量。